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초록·키워드
주요 식량 작물인 감자는 최근 이상 기후로 인하여 생산량이 감소되고 있음에도 불구하고 농가에서 실질적으로 사용가능한 괴경 비대제 개발은 미흡한 실정이다. 감자의 괴경 형성 및 비대에는 식물 내생 호르몬과 자당과 전분 등의 탄수화물이 관여한다. 본 연구에서는 감자 괴경 비대제 개발의 기반을 마련하고자 식물생장조정제의 탐색과 선발된 물질을 토대로 감자 괴경 형성 및 비대에 관련된 여러 요인의 함량 변화를 분석하였다.
우수한 생장조정제 선발을 위하여 Prohexadione-calcium, Choline chloride, Diniconazole, Prohydrojasmon, 1-Naphthalen acetic acid, Salicylic acid, Gibberellin 4+7 등 7종을 감자의 괴경 비대기에 엽면 처리한 결과, 그 중 Diniconazole(Din)과 Prohydrojasmon(PDJ) 처리구에서 생육이 억제되고 괴경비대에 의한 수량성이 크게 증가하였다. 이 두 물질의 괴경 형성 및 비대 요인을 분석한 결과, 무처리구에 비해 초장과 GA 함량이 감소되었고, ABA함량이 증가된 반면, 식물 내생호르몬 JA, 자당과 전분의 함량은 미비한 차이를 보였다. 따라서 감자의 괴경 형성 및 비대에는 식물생장조정제 처리에 의한 식물호르몬, 자당, 전분 등의 상호작용이 관여하는 것으로 판단된다. 따라서 본 연구에서는 식물생장조정제 처리에 의해 식물호르몬, 자당, 전분의 상호작용이 감자의 괴경 형성 및 비대에 영향을 미치는 것을 확인하였으며, Diniconazole 및 Prohydrojamon의 감자 괴경 비대제로서의 농업적 활용 가능성을 확인하였다.
우수한 생장조정제 선발을 위하여 Prohexadione-calcium, Choline chloride, Diniconazole, Prohydrojasmon, 1-Naphthalen acetic acid, Salicylic acid, Gibberellin 4+7 등 7종을 감자의 괴경 비대기에 엽면 처리한 결과, 그 중 Diniconazole(Din)과 Prohydrojasmon(PDJ) 처리구에서 생육이 억제되고 괴경비대에 의한 수량성이 크게 증가하였다. 이 두 물질의 괴경 형성 및 비대 요인을 분석한 결과, 무처리구에 비해 초장과 GA 함량이 감소되었고, ABA함량이 증가된 반면, 식물 내생호르몬 JA, 자당과 전분의 함량은 미비한 차이를 보였다. 따라서 감자의 괴경 형성 및 비대에는 식물생장조정제 처리에 의한 식물호르몬, 자당, 전분 등의 상호작용이 관여하는 것으로 판단된다. 따라서 본 연구에서는 식물생장조정제 처리에 의해 식물호르몬, 자당, 전분의 상호작용이 감자의 괴경 형성 및 비대에 영향을 미치는 것을 확인하였으며, Diniconazole 및 Prohydrojamon의 감자 괴경 비대제로서의 농업적 활용 가능성을 확인하였다.
목차
- 1. Introduction 12. Materials and methods 52.1. Experimental conditions and sampling 52.2. Measure of plant growth characteristics 62.3. Quantitative measurement of phytohormones contents involved in tuberization 62.3.1. Extraction and quantification of gibberellic acid (GA) 62.3.2. Extraction and quantification of abscisic acid (ABA) 72.3.3. Extraction and quantification of jasmonic acid (JA) 82.4. Quantitative measurement of carbohydrate contents involved in tuberization 92.4.1. Extraction and quantification of sucrose 92.4.2. Extraction and quantification of starch 92.5. Statical analysis 103. Results and discussion 113.1. Experiment 1. Screening and selection of plant growth regulators involved in tuberization 113.1.1. Measure of plant growth characteristics 113.1.2. Quantity survey 143.1.3. Quantitative measurement of phytohormones contents involved in tuberization 183.2. Experiment 2. Analysis of phytohormones and carbohydrate contents involved in tuberization 203.2.1. Measure of plant growth characteristics 203.2.2. Chlorophyll contents 243.2.3. Quantitative measurement of phytohormones contents involved in tuberization 253.2.4. Quantitative measurement of carbohydrate contents involved n tuberization 314. Conclusion 365. References 37Abstract (in Korean) 42
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