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논문 기본 정보
- 자료유형
- 학위논문
- 저자정보
- 지도교수
- 최인호
- 발행연도
- 2022
- 저작권
- 영남대학교 논문은 저작권에 의해 보호받습니다.
이용수7
초록· 키워드
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근육위성세포(근육줄기세포)는 근육조직에 존재하는 줄기세포로써 근육의 발달과재생에 관여하며 근육형성에 관여하는 인자들(myoblast determination protein 1: MYOD, myogenin: MYOG, myogenic factor 5: MYF5 등)에 의해 근육세포로 분화한다. 그러나 근육위성세포가 근육 세포로 분화할 때 관여하는 세포막 부착 인자들의 작용기전은 명확하게 밝혀지지 않았다. 본 연구에서는 면역글로불린 단백질(immunoglobulin superfamily)의 일종이며, 세포부착분자(cell adhesion molecule)로 알려진 IgLON4와 5가 근육위성세포의 분화과정에서 어떠한 역할을 하는 지에 대해 자세히 연구하였다. IgLON4와 5 유전자는 마우스 유래 근아세포(C2C12)와 근육위성세포가 근육세포로 분화하는 과정 동안 발현이 증가하였다. IgLON4와 5 유전자 발현을 억제(knockdown) 시키거나 항체 처리(immunoneutralization)를 통하여 단백질을 억제하였을 경우 근관(myotube)의 형성과 근육발달 조절인자들(MYOD, MYOG, myosin)의 발현이 정상 세포에 비해 감소하였다. 특히 IgLON4와 5는 근아세포의 분화과정 동안 뚜렷한 기능 차이를 나타내었다. IgLON4의 경우 근아세포의 분화과정에서 세포-세포 부착부위에 지질뗏목의 축적을 촉진하고, 지질뗏목에 존재하는 구성 단백질 성분을 조절함으로써 근육다발과 유사하게 근관이 한쪽 방향으로 정렬하는 기능을 수행하는 것으로 확인되었으며, IgLON5는 근아세포의 분화 초기에 세포-세포 부착 기능을 담당함으로써 세포외기질(extracellular matrix: collagen type 1 alpha 1: COL1a1, fibromodulin: FMOD, dermatopontin: DPT, and thrombospondin 1: THBS1), 세포막 접착 단백질(cadherin 15: CDH15) 및 세포골격 리모델링 단백질(wiskott?Aldrich syndrome protein: WASP) 유전자의 발현을 조절함으로써 근아세포의 분화를 조절하는 것으로 관찰되었다. 손상된 근육의 재생과정 동안 IgLON4와 5의 발현을 관찰하기 위해 마우스근육에 cardiotoxin (CTX)를 처리하고 7일 동안 유지하였으며, IgLON4와 IgLON5 의 발현이 손상되지 않은 근육에 비해 재생 중인 근육에서 증가함을 관찰하였다. 본 연구는 지금까지 신경 발달 과정을 중심으로 연구되어온 IgLONs이 근육의 분화 과정뿐만 아니라 재생에 중요한 역할을 한다는 사실을 새롭게 밝혀냈으며, 향후 근육 관련 질병의 치료제 개발에 필요한 중요한 단서를 제공할 수 있을 것으로 판단된다.
목차
- Abstract 21. Introduction 42. Literature review 72.1 Skeletal muscle 72.2 Myogenesis and development 102.3 Muscle development regulators 112.4 Skeletal muscle regeneration and MSCs 132.5 Muscle degeneration 152.6 The role of the extracellular matrix constituting the muscle 162.7 FMOD 172.8 Immunoglobulin-like cell adhesion molecules, IgLON4 and IgLON5 182.9 Lipid rafts 233. Materials and Methods 253.1 Cell Culture 253.2 Immunoneutralization of IgLON4 and IgLON5 263.3 Gene knockdown 273.4 MTS assay 293.5 Cell adhesion force analysis using centrifugation 293.6 Animal experiment 303.7 Immunocytochemistry 303.8 Fusion indices 313.9 Total RNA extraction, cDNA synthesis, and real-time RT-PCR 323.10 Extraction of lipid rafts 353.11 Western blot analysis 353.12 Immunohistochemistry 363.13 Immunofluorescence 373.14 Statistical analysis 374. Results 384.1 Expression of IgLON family genes in C2C12 myoblasts 384.2 IgLON5 expression in myoblast differentiation 424.3 IgLON5 expression and myotube formation 464.4 The roles of IgLON5 during adhesion and proliferation 494.5 Gene expression profiles in Wt and IgLON5kd cells 524.6 IgLON5 expression during muscle regeneration 554.7 The adhesion function of IgLON5 with interaction of various factors in muscle differentiation and regeneration 584.8 IgLON4 expression in myoblast differentiation 604.9 Alignment functions of IgLON4 in myoblast differentiation 654.10 The regulation of lipid rafts accumulation of IgLON4 in muscle differentiation 694.11 Myogenic differentiation of myoblasts in aligned environments 764.12 IgLON4 expression in muscle regeneration 814.13 The adhesion and accumulation of lipid rafts of IgLON4 roles in myotube alignment 844.14 Effect of double knockdown of IgLON4 and IgLON5 on myoblast differentiation 884.15 Effects of IgLON4kd, IgLON5kd, and Dbkd in adhesion and proliferation on myoblasts 934.16 Effects of IgLON4kd, IgLON5kd, and Dbkd in adhesive force on myoblasts 964.17 Expression of myogenic markers and IgLON family genes in mouse primary MSCs 1014.18 Expression of IgLON family in chicken primary MSCs 1044.19 Expression of IgLON family in chicken embryonic muscle tissue 1075. Discussion 1166. References 123적요 134