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논문 기본 정보
- 자료유형
- 학위논문
- 저자정보
- 지도교수
- 홍상훈
- 발행연도
- 2020
- 저작권
- 동의대학교 논문은 저작권에 의해 보호받습니다.
이용수46
이 논문의 연구 히스토리 (2)
2021
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노근(Phragmitis Rhizoma)은 갈대(Phragmites communis Trin.)의 뿌리로서 한의학에서 발열 및 구토를 완화하고 체액의 순환을 향상시키기 위한 목적으로 사용되어 왔다. 최근 노근 추출물 또는 구성 성분이 골수 독성 및 염증 반응에 대한 보호 효과가 있는 것으로 보고된 바 있으나 산화적 스트레스에 대한 연구는 아직 수행된 바 없다.
본 연구에서는 Chang 간세포에서 산화적 스트레스로 인한 노근 에탄올 추출물의 보호 효과를 조사 하였다. 본 연구의 결과에 따르면 노근 추출물은 과산화수소(H2O2)에 의한 활성 산소종(ROS)의 생성을 현저하게 억제하면서 생존력의 감소와 apoptosis를 억제시키는 것으로 나타났다. 또한, 노근 추출물은 H2O2에 의하여 유발 된 comet tail 생성 및 γH2AX 단백질의 인산화를 현저하게 억제하여 노근 추출물이 산화적 스트레스에 의한 DNA 손상을 보호한다는 것을 알 수 있었다. 그리고 노근 추출물은 H2O2로 처리된 Chang세포의 미토콘드리아 막 잠재력(MMP)의 손실을 억제함으로써 ATP 합성을 유지시켰으며, 이는 노근 추출물이 산화적 스트레스에 대한 미토콘드리아의 기능 보존을 통하여 에너지 대사를 유지한다는 것을 의미한다. 아울러 immunoblotting 결과에 의하면, 노근 추출물은 H2O2에 의한 Bcl-2 발현의 감소와 Bax의 발현 증가를 억제하였다.
따라서 노근 추출물은 ROS 생성 차단을 통해 에너지 항상성을 조절함으로써 Chang 간세포를 산화적 손상에서 보호할 수 있으며, 이 과정은 최소한 미토콘드리아 매개 apoptosis 경로의 차단과 관련이 있을 것으로 생각된다.
본 연구에서는 Chang 간세포에서 산화적 스트레스로 인한 노근 에탄올 추출물의 보호 효과를 조사 하였다. 본 연구의 결과에 따르면 노근 추출물은 과산화수소(H2O2)에 의한 활성 산소종(ROS)의 생성을 현저하게 억제하면서 생존력의 감소와 apoptosis를 억제시키는 것으로 나타났다. 또한, 노근 추출물은 H2O2에 의하여 유발 된 comet tail 생성 및 γH2AX 단백질의 인산화를 현저하게 억제하여 노근 추출물이 산화적 스트레스에 의한 DNA 손상을 보호한다는 것을 알 수 있었다. 그리고 노근 추출물은 H2O2로 처리된 Chang세포의 미토콘드리아 막 잠재력(MMP)의 손실을 억제함으로써 ATP 합성을 유지시켰으며, 이는 노근 추출물이 산화적 스트레스에 대한 미토콘드리아의 기능 보존을 통하여 에너지 대사를 유지한다는 것을 의미한다. 아울러 immunoblotting 결과에 의하면, 노근 추출물은 H2O2에 의한 Bcl-2 발현의 감소와 Bax의 발현 증가를 억제하였다.
따라서 노근 추출물은 ROS 생성 차단을 통해 에너지 항상성을 조절함으로써 Chang 간세포를 산화적 손상에서 보호할 수 있으며, 이 과정은 최소한 미토콘드리아 매개 apoptosis 경로의 차단과 관련이 있을 것으로 생각된다.
목차
List of Figures ······················································································ⅳAbbreviations ························································································ⅴⅠ. 서 론 ·······································································································1Ⅱ. 재료 및 방법 ··························································································31. 노근 추출물의 준비 ·············································································32. 세포 배양 ···································································································33. 세포 생존율 측정 및 세포 형태 관찰·······························································34. Apoptosis 유도 확인을 위한 핵의 형태적 변화 관찰···································45. Apoptosis 유도의 정량적 분석 ·······························································46. ROS 생성의 측정 ·····················································57. DNA 손상 확인을 위한 comet assay ·······························································58. 단백질의 분리, 전기영동 및 Western blot analysis ······································69. 미토콘드리아 막 잠재력(mitochondrial membrane potential, MMP, Δψm) 분석 ···710. ATP 함량의 변화 측정 ········································································711. 통계적 분석 ······························7Ⅲ. 결 과 ······························································81. Chang 세포의 증식에 미치는 노근 추출물과 H2O2의 영향 ·························82. H2O2에 의한 Chang 세포의 증식 억제에 미치는 노근 추출물의 영향 ··· 103. Chang 세포에서 H2O2에 의한 apoptosis 유도에 미치는 노근 추출물의 영향 ··124. Chang 세포에서 H2O2에 의한 ROS의 생성에 미치는 노근 추출물의 영향 ··145. Chang 세포에서 H2O2에 의한 DNA 손상에 미치는 노근 추출물의 영향 ·············166. Chang 세포에서 H2O2에 의한 미토콘드리아 기능 손상에 미치는 노근 추출물의 영향 ·····197. Chang 세포에서 H2O2에 의한 Bcl-2 및 Bax의 발현 변화에 미치는 노근 추출물의 영향 ······21Ⅳ. 고 찰 ···································23Ⅴ. 결 론 ··············································26참고문헌 ···························································28Abstract ··························································34
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